近日來，公司再次接到凝膠回收效率低的反饋，經過深入探究客戶反映的問題，小編發現很多用戶都是將擴增產物直接測濃度后估算回收效率的，并且回收的DNA濃度也各不相同，于是設計一系列相關模擬實驗，如下：

用于回收DNA的樣本：

1. 陳舊細菌細胞中提取的pMD18 的單酶切產物，含部分降解的DNA，用以模擬含有部分引物二聚體或有非特異擴增的PCR擴增產物，如下圖

2. 經過DNA純化試劑盒（Simgen Cat.No. 2101050）純化后的陳舊細菌細胞中提取的pMD18 的單酶切產物；

3. 正常pMD18的單酶切產物，只有單條帶的DNA，用以模擬只有特異性擴增的PCR產物；

4. 經過DNA純化試劑盒（Simgen Cat.No. 2101050）純化后的正常pMD18 的單酶切產物；

實驗設備：

臺式小量離心機、水浴鍋、電泳設備、恒溫培養箱、Sim-100微量紫外分光光度計。

實驗方法：

此實驗分兩批進行：

第一批是陳舊細菌細胞中提取的pMD18 的單酶切產物及其純化產物為樣本，

第二批是正常pMD18 的單酶切產物及其純化產物為樣本。

將酶切產物及酶切純化產物按2μg、1μg、500ng及100ng上樣量電泳后做DNA凝膠回收（試劑盒為Simgen Cat.No. 2001050）實驗。實驗組分A組（純化前酶切產物）、B組（純化后酶切產物），C組（對照組，按B組設計的DNA加入量，與150μl融化的瓊脂糖凝膠混合，冷卻凝固后作為無損失的含DNA凝膠塊）。

樣本電泳加樣順序：

將A、B、C 三組按照凝膠DNA回收試劑盒說明書進行操作，所回收的DNA用25μl Buffer TE洗脫，并測OD值。

實驗測試結果如下：

從上表結果可分析得到：

1.  100 ng上樣量的回收率有很大跳動，甚至有的看似回收率超過100%，估計是因為在DNA濃度過低（<10ng/μl）時，分光光度計測到的OD值會出現很大的偏差，因此100 ng上樣量測得的回收率不能作為有效的分析數據。

2.  實驗組中拖尾pMD18單酶切產物的回收率均低于正常pMD18單酶切產物，可以解釋為陳舊樣本中所含的小片段降解DNA，在切膠時這些拖尾帶未被切下，造成了DNA的損失；

3.  實驗組中純化前樣本的回收率均低于純化后樣本。是因為酶切后溶液中有組份（比如水解后的單核苷酸）提高了OD260的吸光度，因而純化后的DNA樣本的OD260的吸光度更為真實。

最后我們可以得出結論：

1. 以OD260的吸收值來判定凝膠DNA回收試劑盒的回收效率并不科學，因為有很多因素會影響OD值，如PCR體系中的多余引物、dNTPS及非特異擴增產物等。

2. 如果要精確測試凝膠DNA回收試劑盒回收效率，應先確保DNA樣本中沒有其他雜質或核酸干擾OD260的吸收值。

3. DNA上樣量不能過低，如果有可能，應將全部的PCR擴增產物上樣電泳，否則分光光度計在測試10ng/μl以下濃度的核酸時，計算回收率時會出現嚴重的偏差。